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Capitulo 41:
Cultivos de muestras orgánicas Humanas
Autores:
Cultivos de muestras orgánicas Humanas
INTRODUCCIÓN
Es un medio de
estudio del que nos servimos para determinar la causa de una infección.
El procedimiento que se utiliza suele iniciarse con la toma de muestras
de los tejidos, exudados, líquidos corporales, etc. del paciente. A
continuación, estas muestras se envían al laboratorio de microbiología
para su estudio posterior. El microscopio nos permite observar los
microorganismos (los presentes en esas mismas muestras), tales como
hongos o bacterias. El cultivo sirve para lograr una proliferación de
esos microorganismos y de ese modo poder estudiarlos mejor.
El diagnóstico etiológico de la enfermedad infecciosa se establece desde
el momento en que se aísla e identifica el agente causante.
Entre los
microorganismos que podemos encontrar, tenemos:
bacterias,
micoplasmas y otros organismos de la
clase mollicutes,
clamidias y rickettsias,
parásitos,
hongos, Virus.
Foto 1: recipientes para recolección y transporte
de muestras
CULTIVO BACTERIANO
En condiciones
normales, la piel, las membranas y las mucosas de nuestro organismo
están colonizadas por diferentes especies de microorganismos. Entre
ellos, y de modo destacado, se encuentran distintos tipos de bacterias,
generalmente inofensivas, incluso algunas beneficiosas.
Otras bacterias son
capaces de causar infecciones sólo en determinadas circunstancias:
cuando proliferan demasiado, o bien en personas con problemas
autoinmunes, o que están tomando determinados fármacos.
Finalmente, hay bacterias que son capaces de
causar daño aun en circunstancias normales.
Cuando se sospecha
de una infección por una bacteria, se tomará una muestra del lugar de la
infección; por ejemplo un exudado (secreción) de la conjuntiva del ojo,
en caso de conjuntivitis o bien una muestra de orina si hay una
infección urinaria; o de líquido cefalorraquídeo si se trata de una
meningitis
Las muestras pueden
proceder de prácticamente cualquier lugar del organismo.
Algunas de las
bacterias (observación directa por tinción de Gram.) importantes que
causan infección son:
-
Bacterias Gram. positivas:
-
Estreptococos: pueden ser responsables de infección en la sangre,
faringitis, infección de las válvulas del corazón, fiebre reumática,
escarlatina, neumonía, etc.
-
Corinebacterias: difteria, infección de orina, etc.
-
Clostridios: tétanos, botulismo, gangrena gaseosa, infección de la
sangre, etc.
-
Bacillus: antrax.
-
Estafilococos: pueden causar Neumonía, infecciones supuradas (con pus)
en la piel y abscesos en otros lugares, síndrome del shock tóxico,
meningitis, artritis, osteomielitis, enteritis, etc.
-
Bacterias Gram negativas:
-
Salmonella, Shigella y Campylobacter: pueden provocar infección en el
intestino.
-
Escherichia coli y otras enterobacterias: pueden provocar neumonía,
infección de orina, infección en la sangre, etc.
-
Legionella:
puede provocar una neumonía grave y atípica (la enfermedad del
legionario)
-
Meningococos: puede causar meningitis cerebroespinal.
-
Haemophyllus: infección respiratoria, meningitis, etc.
-
Gonococo: causa la gonorrea
-
Brucella: brucelosis (fiebre de malta).
-
Pseudomonas: infecciones de oído e infecciones en múltiples lugares en
personas debilitadas (neumonías en pacientes de UVI, infección en los
pies en diabéticos, infección respiratoria en pacientes con fibrosis
quística, etc.).
-
Bordetella: tosferina
-
Otras bacterias
importantes no se tiñen bien con este método y para ellas se usan otros;
por ejemplo, para las bacterias (micobacterias) que causan la
tuberculosis o la sífilis (treponemas).
REALIZACIÓN Y TRANSPORTE
La muestra se
envía al laboratorio de microbiología, para su estudio, y hasta que sea
procesada, se procurará que se altere lo menos posible.
Los resultados que se obtienen, dependen en gran medida de la calidad de
la muestra, de la calidad de la obtención y de las condiciones de
transporte, por lo que debemos:
-
Obtener las muestras preferentemente antes de comenzar la antibioterapia
o bien antes de introducir cualquier modificación al tratamiento con
antimicrobianos.
-
La
muestra obtenida no debe presentar contaminación con flora habitual, o
ser la mínima posible.
-
Los
sistemas de recolección deben ser apropiados al tipo y volumen de la
muestra que se desea obtener. El material usado debe ser estéril y libre
de material residual, como detergentes o desinfectantes.
-
La
muestra debe llegar al laboratorio tiempo determinado
-
Las
muestras deben ser identificadas con una etiqueta adherida al envase, y
los datos anotados deben coincidir exactamente con los de la solicitud
de examen.
-
Deben incluirse aquellos datos del paciente que permitan al laboratorio
elegir el mejor procedimiento para el aislamiento de patógenos, tales
como edad, hipótesis diagnóstica, tratamientos concomitantes
(especialmente antibióticos) enfermedades concomitantes, etcétera.
Foto 2: Solicitudes
para exámenes de muestras.
OBSERVACIÓN
MACROSCÓPICA
-
Observación directa sin tinción o preparación al fresco:
-
Para la búsqueda de hongos, bacterias y parásitos. La muestra se
suspende en suero fisiológico, permite encontrar Tricomonas Treponemas
en solución de KOH, preferentemente en la identificación de hongos
o bien en tinta china. la visualización de Cryptococcus neoformans.
-
Observación directa con tinción:
-
Tinción de Gram.
La diferente coloración que adquieren las bacterias Grampositivas se
basa en el menor contenido lípidos de la pared celular y en la reducida
permeabilidad a los solventes de estos microorganismos, en comparación
con los gramnegativos. Las bacterias grampositivas se tiñen violeta por
la retención del complejo cristal violeta genciana/yodo, mientras que
las grannegativas no retienen el complejo y se tiñen rojas al usar la
contratinción de safranina.
La tinción
de Gram ayuda a determinar rápidamente las características morfológicas
, por lo que es útil en la
indicación de los antibióticos. Esta tinción también permite
establecer si el material enviado al
laboratorio para su cultivo posee la calidad adecuada. Por ejemplo, es
inadecuada una muestra de expectoración en que se observan
abundantes células epiteliales, lo que indica que está
constituida principalmente por saliva y no secreción del tracto
respiratorio. La presencia de polimorfosnuecleares (PMN) puede indicar
infección. Los hongos levaduriformes se observan formando
pseudomicelios cuando hay invasión y no sólo colonización.
-
Tinción de Giemsa y Wright.
Es útil en el diagnóstico de algunos parásitos como malaria y babesiosis
. En las lesiones producidas por virus Herpes simplex y virus
varicela-zoster, se observan células gigantes multinucleadas, propias de
las lesiones virales, lo que permite distinguirlas de las lesiones
piodérmicas bacterianas.
-
Tinción argéntica
(Gomori metenamina de plata, Dieterle). Es una técnica difícil de
efectuar, reservada a los laboratorios especializados, útil en la
detección de Pneumocytis carinii, Legionella.Treponema, hongos,
rickettsias, y microorganismos asociados a la enfermedad por arañazo de
gato.
-
Tinción ácido periódico de Schiff
(PAS). Permite la detección de hongos en muestras de tejido.
-
Tinción con anaranjado de acridina.
Utiliza un fluorocromo que tiñe el ácido desoxirribonucleico (ADN). Es
más sensible que la tinción de Gram , ya que aún las bacterias dañadas
por los antibióticos pueden ser visualizadas. Requiere de microscopio de
fluorescencia.
-
Tinción con azul de metileno.
Es usada en la búsqueda de leucocitos fecales, permitiendo una buena
tinción de los núcleos de estas células. Se visualizan en las
infecciones intestinales invasoras de la pared del tubo digestivo, como
las producidas por Escherichia coli enteroinvasora, Shigella, colitis
ulcerosa, enfermedad de Crohn y enterocolitis asociada a antibióticos.
ALGUNOS CULTIVOS
-
Cultivo de Mycobacterium spp.
Util en el diagnóstico de tuberculosis pulmonar pausibacilar y
especialmente en las formas extrapulmonares. Actualmente está indicado,
además del cultivo en medio sólido, el cultivo en medios líquidos,
disminuyendo así los tiempos de desarrollo. En nuestro laboratorio
utilizamos el sistema MB/Bact semiautomizado para todo tipo de muestras,
excepto sangre.
-
Cultivo de hongos.
La búsqueda puede ser de hongos levaduriformes o miceliados. Es
importante conocer hacia cuál de ellos se inclina la sospecha, dado que
los tiempos de incubación son diferentes. Los hongos levaduriformes se
incuban por plazos que oscilan entre 5 y 7 días, en cambio los
filamentos deben ser incubados por plazos más largos, de 20 hasta 30
días.
-
Cultivo anaerobio.
Algunas bacterias de importancia clínica son anaeróbicas, difíciles de
cultivar y oxígeno lábiles, por lo que en su recolección y transporte
deben usarse envases especiales que contengan una atmósfera reducida, es
decir, con un bajo potencial de oxidoreducción. Es de extraordinaria
importancia que la muestra sea procesada de inmediato.
La muestra
en lo posible debe ser obtenida por aspiración. Deberá evitarse la
contaminación con flora residente, ya que en ella están ampliamente
representadas las bacterias anaeróbicas.
Los sitios
anatómicos adecuados para la obtención de muestras para estudio de
anaerobios son líquidos orgánicos estériles (Líquido pleural,
sangre, bilis, líquido peritoneal, liquido sinovial, (LCR), muestras
quirúrgicas obtenidas de sitios estériles (Contenido de abscesos,
aspirado de heridas profundas) y muestras de biopsias obtenidas en forma
aséptica (Transcutánea pulmonar, aspiración vesical suprapúbica, líquido
de culdocentesis , etcétera).
Es
importante tener presente que a toda muestra procesada para la búsqueda
de anaerobios, debe efectuársele una tinción de Gram. Dado que los
cultivos tardan un tiempo en dar resultados, el Gram puede
proporcionar una buena información temprana, útil para iniciar
tratamiento y, al mismo tiempo, verifica la concordancia con los
resultados de los cultivos.
-
Catéteres intravenosos.
Los catéteres intravenosos son cultivados cualitativa o
semicuantitativamente, dependiendo de las técnicas usadas en los
laboratorios. La técnica de cultivo semicuantitativo (Maki) , consiste
en hacer rodar el extremo del catéter sobre la superficie de una placa
de medio cultivo, e informar el número de colonias que se desarrollan en
ésta. La presencia de 15 o más colonias se correlaciona con inspección.
Falta de
desarrollo en el cultivo:
La
falta de desarrollo de un cultivo puede deberse a:
-
Diagnóstico
incorrecto. La inspección es debida a microorganismos no cultivables en
los medios habituales, como virus, rickettsias, mycoplasmas y
chlamydias.
-
Interpretación
errada de la tinción de Gram. Se interpreta como microorganismos la
presencia de artefactos en la preparación.
-
Muestra
inadecuada. La muestra clínica no es representativa del
material propio del sitio de la infección.
-
Transporte
inadecuado o prolongado. Si esto sucede, algunos
microorganismos pueden no ser viables al momento de llegar al
laboratorio. Esto ocurre con anaerobios, estreptococos, Neisseria. Si el
transporte es prolongado, puede haber sobre crecimiento de flora
residente que oculte la presencia de patógenos, lo que pueden haber
estado en menor número.
-
Terapia
con antibióticos. Aunque sea una dosis única, ésta muchas veces es
suficiente para inhibir o retardar el crecimiento bacteriano.
-
Metodología
de cultivo inadecuada. Se requiere de técnicas especiales para el
cultivo de determinados patógenos, como el caso de anaerobios,
micobacterias, hongos y ciertas bacterias exigentes en cuanto a sus
nutrientes y/o condiciones de vida. Por esto, el laboratorio debe
conocer cuál es la sospecha diagnóstica, para tener la oportunidad de
cultivar al agente etiológico.
TÉCNICAS
INMUNOLÓGICAS
El
diagnóstico rápido de las enfermedades infecciosas se ve facilitado por
el empleo de técnicas inmunológicas abreviadas, aunque ninguna de ellas
es tan específica o sensible como el cultivo. Las técnicas inmunológicas
pueden estar orientadas a la búsqueda de anticuerpos o de antígenos. Las
destinadas a la búsqueda de anticuerpos necesitan del tiempo necesario
para que se produzca un alza significativa del título de anticuerpos.
Los antígenos en cambio, pueden ser detectados desde el comienzo de la
enfermedad. Constituye una ventaja el que aún durante el tratamiento con
antibióticos, los antígenos sean detectables.
-
Entre las enfermedades infecciosas diagnosticadas por exámenes
serológicos están sífilis, rubéola, leptospirosis toxoplasmosis,
mononucleosis infecciosa, etcétera.
-
Existen diferentes exámenes que permiten su titulación, entre los que se
cuentan aglutinación, precipitación, fijación del complemento,
hemaglutinación, neutralización, inmunofluorescencia, ensayo
inmunoenzimático, radioinmunoensayo, etcétera.
-
Los
exámenes serológicos se usan en la determinación del grado de inmunidad
que posee un sujeto para el diagnóstico de infección aguda.
-
Diagnóstico del estado inmune. Es de interés verificar el estado inmune
del sujeto. Una situación de este tipo, por ejemplo, es determinar el
grado de inmunidad frente a rubéola en una mujer en edad fértil.
-
Diagnóstico de infección aguda. El diagnóstico de infección aguda se
establece comparando los títulos de dos sueros pareados, uno obtenido en
la fase aguda y otro en la fase de convalescencia, o 14 días después de
la primera muestra. El suero de fase aguda debe obtenerse tan temprano
como sea posible en el transcurso de la enfermedad. El suero de la fase
convaleciente debe extraerse no antes de 10 días de comenzada la
enfermedad, de preferencia 2-4 semanas después.
-
Sueros pareados. Cuando se usan sueros pareados, la conversión de
seronegativo a seropositivo o un aumento de 4 veces o más del título de
anticuerpos obtenido inicialmente es indicador de infección reciente.
Sería altamente recomendable que en todo paciente hospitalizado con un
estado febril no diagnosticado, se guarde una muestra de suero
congelado, para su uso en eventuales estudios serológicos. Para que las
pruebas serológicas pareadas tengan validez ambas muestras de suero
(fase aguda y fase de convalecencia) deben procesarse simultáneamente.
-
Muestra única de suero (fase aguda). Una muestra única de suero también
puede ser útil para el diagnóstico. Los anticuerpos tipo Igm aparecen
tempranamente durante la infección primaria y persisten por varias
semanas. Por lo tanto la presencia de anticuerpos Igm es indicadora de
infección reciente.
DETECCIÓN DE
ANTÍGENOS
Son
pruebas destinadas a la detección de antígenos en las muestras clínicas.
Estas reacciones inmunológicas no dependen de la presencia de
microorganismos viables, sino que sólo de sus antígenos, por lo que
pueden ser usadas aun en sujetos que estén recibiendo antibióticos.
Estos exámenes son de gran apoyo al diagnóstico por su rapidez, pero no
sustituyen a los cultivos, a la tinción de Gram ni a otras técnicas de
diagnóstico. Entre las técnicas más usadas está la aglutinación mediante
partículas de látex recubiertas con anticuerpos específicos, que pueden
utilizarse para demostrar en forma rápida la presencia de antígenos
bacterianos y fúngicos.
En el diagnóstico
de cryptococosis, por ejemplo, se usan partículas de látex recubiertas
con anticuerpos antipolisacárido de la cápsula del Crytococcus
neoformas, que provocan una aglutinación visible cuando está presente en
el LCR o en el suero del paciente. En casos de meningitis, se puede
detectar en el LCR la presencia de antígenos de Haemophilus influenzae
(tipo b; Streptococcus pneumoniae (omnitipo); Neisseria meningiditis
(tipos A, B, C, W e Y) y de Streptococcus beta hemolítico grupo B.
-
Ensayo inmunoenzimático (ELISA). Esta técnica detecta una amplia
variedad de agentes infecciosos. Se deja interactuar el suero del
paciente, en el que se encuentra el antígeno, con un anticuerpo
específico, luego se extrae el anticuerpo no ligado sobrante y se agrega
una inmunoglobulina anti-humana conjugada con una enzima específica
(fosfatasa alcalina, peroxidasa). Finalmente se agrega un sustrato para
la enzima. La enzima ligada al complejo actúa sobre el sustrato,
produciendo cambio de color, el que puede leerse a simple vista o
mediante un espectrofotómetro, permitiendo su cuantificación.El color
que se produce es proporcional a la cantidad de anticuerpo específico
que se fija al antígeno. El método se utiliza en la detección de virus
sincial respiratorio. Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae,
rotavirus, adenovirus, virus hepatitis,virus varicela-zóster, etcétera.
-
Inmunofluorescencia directa (IFD). Usa un anticuerpo marcado con
isotiocianato de fluoresceína, que permite la identificación de
antígenos bacterianos o virales en las muestras clínicas. Se usa en la
detección de virus respiratorios (influenza, parainfluenza, adenovirus,
virus sincicial respiratorio), virus herpes, sarampión y parotiditis,
así como en bacterias como Bordetella pertussis, Rickettsia rickettsia y
Chlamydia trachomatis. Es una técnica muy sensible, que requiere de
sueros de muy buena calidad y de personal adiestrado.
-
Inmunofluorescencia indirecta (IFI). Usa el suero del paciente para
investigar anticuerpos. Este suero es incubado en presencia de un
antígeno específico. Para la visualización del completo resultante, se
utiliza un anticuerpo antiglobulina humana, marcado con isotiocianato de
fluoresceína.
ESTUDIOS
ESPECÍFICOS MAS REALIZADOS
UROCULTIVO
El urocultivo es el estudio microbiológico de la orina para detectar la
presencia de microorganismos y la posibilidad o no de infección de las
vías urinarias. Lo que debe ser confirmado por un cultivo de orina con
un recuento de colonias superior a 100 000 colonias por ml si la muestra
es tomada con bolsa recolectora o de la parte media de la micción
(segundo chorro). La Infección Urinaria (ITU) se define como la
invasión, multiplicación y colonización del tracto urinario por gérmenes
que habitualmente provienen de la región perineal. La incidencia exacta
en el niño no se conoce, en recién nacidos se estima en 1% con una mayor
proporción de varones afectados (relación hombre y mujeres es 3:1), en
lactantes 3 a 5% con igual proporción hombre-mujer, y en preescolares y
escolares una incidencia del 2% con una clara preponderancia en mujeres
(H:M = 1:5).
A los siete años de edad, un 8,4% de las niñas y 1,7% de los
niños, habrán sufrido al menos un episodio.
Objetivos:
-
Obtención de una muestra con fines diagnósticos y / o terapéuticos.
-
Utilizar métodos adecuados para la validez de la muestra.
-
Manejo correcto de la muestra.
Foto 3:
contenedores para orina
Material:
-
Guantes no estériles.
-
Gasas estériles.
-
Frasco recolector
estéril.
-
Material para la higiene genital.
-
Cuña o botella.
-
Bolsa colectora en niños y en lactantes.
-
Si el paciente
está sondado necesitará:
Procedimiento:
La muestra idónea
es la primera micción de la mañana, ya que permite la multiplicación de
bacterias durante la noche.
La recogida debe
realizarse con absoluta asepsia, ya que si no es así podría dar
resultados erróneos.
-
Técnicas para
mujeres:
-
Se
lavará las manos cuidadosamente con agua y jabón, las enjuagará con agua
y las secará con una toalla limpia.
-
Se
separarán los labios mayores y menores, y los mantendrá separados en
todo momento hasta que se haya recogido la orina.
-
Con
una gasa enjabonada se lava bien la vulva pasándola de delante hacia
atrás, se repetirá el proceso un total de 4 veces.
-
Enjuagar cuidadosamente con agua hervida para eliminar los restos de
jabón.
-
Se
indicará a la paciente que orine desechando los 20-25 primeros
mililitros, tras lo cual y sin interrumpir la micción, se recogerá el
resto de la orina en el recipiente.
-
El
frasco debe sujetarse para que no tome contacto con pierna, vulva o ropa
del paciente. Los dedos no deben tocar el borde del frasco o su
superficie interior.
-
Técnica para
hombres:
-
Lavado de las manos con agua y jabón.
-
Retraer completamente el prepucio, que se mantendrá así en todo momento,
hasta que se haya recogido la orina.
-
Limpiar el glande con jabón neutro.
-
Eliminar los restos de jabón enjuagándolo con agua hervida.
-
Se
pedirá al paciente que orine desechando los primeros 20-25 mililitros
para, sin interrumpir la micción, recogerse el resto de la orina en el
recipiente estéril.
-
Técnica para niños.
-
En
niños y niñas mayores la orina se recoge de forma similar a los adultos.
-
En niños y niñas
más pequeños, la orina se recogerá en colectores o bolsas estériles
especialmente diseñadas para ellos de la siguiente forma:
-
Lavado cuidadoso de los genitales y área perineal igual que en los
adultos.
-
Colocar la bolsa de plástico o el colector.
-
Vigilar la bolsa cada 30 minutos y tan pronto como el niño haya orinado,
deben retirarse y enviarse al laboratorio para su procesamiento.
-
Si
la micción no se ha realizado en una hora, se repite la operación
colocando una nueva bolsa.
-
Una
vez recogida la muestra, lave de nuevo la zona genital, para evitar
irritaciones.
-
Envíe la muestra al laboratorio junto con la
petición escrita.
-
Registro en su hoja de evolución de enfermería:
técnica, fecha, hora, características de la orina,
incidencias presentadas.
Transporte.
La
orina debe llegar al laboratorio en el plazo de una hora. Cuando esto no
sea posible debe refrigerarse a 4ºC durante un tiempo máximo de 24
horas. El laboratorio debe controlar el transporte, garantizándose el
que las muestras han sido refrigeradas desde el momento de su toma,
siendo admisible, si no puede garantizarse el transporte correcto, la
utilización de algún conservante (ácido bórico al 2% o el sistema
comercial con bórico-formiato).
Volumen de la
muestra
|
BUSQUEDA |
VOLUMEN
DE ORINA (ml) |
CONSIDERACIONES |
|
Bacterias |
0,5 – 1 |
Primera
orina de la mañana |
|
Hongos |
>20 |
Primera
orina de la mañana |
|
Mycobacterias |
>20 |
Primera
orina de la mañana, 3 días consecutivos |
|
Anaerobios |
1 |
Aspirado
suprapúbico |
|
Virus |
10 - 15 |
Primera
orina de la mañana, enviar con hielo al laboratorio |
-
En
pacientes ingresados con imposibilidad de recoger la muestra por sí
mismos, se realizará sondaje vesical por personal sanitario experto con
las medidas asépticas oportunas.
-
Para la investigación de anaerobios es necesario que la orina se obtenga
por punción suprapúbica.
-
Para la búsqueda de micobacterias, la orina se recoge de la forma
descrita anteriormente durante tres días consecutivos. En este caso el
volumen de orina debe ser 100-150 ml. y se elegirá preferentemente la
primera micción de la mañana. Cuando se sospecha la presencia de hongos
y virus, el volumen de orina será superior a 20 ml. y en el caso de
parásitos se recogerá la orina de 24 horas.
Observaciones:
-
Evitar fugas de orina al poner la parte adhesiva de la bolsa.
-
Despegar la bolsa con cuidado para no lesionar la piel.
-
El sondaje vesical en niños y lactantes es una técnica que se reduce a lo
imprescindible por el gran riesgo de infección que entraña.
RECOGIDA DE
MUESTRAS FECALES
Consiste en la recogida de heces para su estudio en el laboratorio.
Objetivos:
-
Obtener una muestra de heces con fines diagnósticos y/o terapéuticos.
-
Utilizar métodos adecuados para la validez de la muestra.
-
Manejo correcto de las muestras.
-
Utilidad:
-
Coprocultivo.
Se usa de preferencia en la búsqueda de patógenos intestinales
productores de enterocolitis aguda. La muestra se obtiene directamente
de la deposición recientemente emitida o bien de un hisopado rectal.
Debe usarse un medio de transporte adecuado (Cary-Blair) si ésta no va a
ser procesada de inmediato. La selección de los medios de cultivo, así
como el procedimiento de aislamiento a seguir, dependen del agente
etiológico que se esté investigando. Si no se explicita otra situación,
rutinariamente, la búsqueda se concentra en los patógenos habituales
como Salmonella y Schigella. En los casos especiales, debe indicarse si
se sospecha de Escherichia Coli enteropatógena, enteroinvasora,
enterotoxigénica, enterohemorrágica , o entero agregante; Campylobacter,
SPP.,Vibriocholera, Yersinia enterocólitica, etc.
-
Estudios parasicológicos.
-
Estudio oxiuros.
Material
Procedimiento:
-
Informar al paciente de la técnica.
-
Si
el niño puede colaborar indíquele que realice la higiene genital y la
recogida de la muestra en el cuarto de baño.
-
En los pacientes
que no colaboran:
-
Se
les coloca en la posición adecuada sedestación o decúbito supino, sobre
la cuña si se mantienen en ella.
-
Se
les pondrá un pañal limpio (lactantes), que se ira cambiando cada hora
para evitar la contaminación de la muestra por orina.
-
Una
vez realizada la deposición, póngase los guantes, cubra la cuña y
retírela, evitando la contaminación y los malos olores.
-
Si
las deposiciones son líquidas o irritantes, inspeccionar la zona anal en
busca de microlesiones o irritaciones.
-
Utilice dos depresores linguales para recoger la deposición y
transferirla al recipiente. (una muestra como una castaña).
-
Tape el frasco.
-
Identificar el recipiente con la etiqueta del paciente y el tipo de
muestra.
-
Remita la muestra al laboratorio de inmediato, o manténgala a
temperatura ambiente hasta su envío, si este se demora más de 30
minutos, se recurre a utilizar conservantes (10ml de alcohol
polivinílico PVA) y se mantiene en el frigorífico hasta su envío.
-
Para detectar oxiuros en los niños:
-
Colocación de guantes estériles, y secado de la zona anal al niño.
-
La
toma se realiza por al mañana, para ello se separan los glúteos del niño
y se le aplica un trozo de cinta adhesiva en el ano hasta conseguir la
muestra.
-
La
muestra se deposita sobre un portaobjeto para ser enviada al
laboratorio.
COPROCULTIVO
Obtención de la
muestra
Si son formadas o pastosas se toma una porción del
recipiente donde hayan sido emitidas y se transfieren al sistema elegido
para el envío al laboratorio. Se seleccionan zonas donde haya sangre,
moco o pus. No son válidas las muestras contaminadas con orina. No debe
utilizarse para la recogida papel higiénico, porque suelen tener sales
de bario que inhiben algunas bacterias enteropatógenas.
Volumen mínimo de
muestra
Heces
formadas o pastosas: al menos 1 ó 2 gr. para virología, añadir de 2 a 4
gr. más. Muestras del tamaño de una nuez son muy adecuadas pues permiten
realizar la mayoría de las investigaciones posibles. Heces líquidas:
entre 5 y 10 ml.
Transporte.
Para
el estudio bacteriológico es suficiente enviar la muestra en un
recipiente estéril si se va a procesar en el plazo de 1 ó 2 horas
después de su emisión. En caso contrario se remite en un sistema de
transporte para bacterias. En ambos casos se mantiene en refrigeración
hasta el procesamiento, para evitar el sobrecrecimiento de la flora
normal que puede enmascarar o destruir a los enteropatógenos. El frío
puede afectar la viabilidad de Shigella spp. Para el estudio de toxinas
de C. difficile, la muestra se puede mantener hasta 48 horas en
refrigeración, congelada a -20ºC se puede mantener indefinidamente. Este
tipo de muestra, preferiblemente sin medio de transporte, es
indispensable para el examen en fresco, el ensayo de las toxinas de C.
difficile, detección por concentración de huevos o parásitos y estudios
virológicos (cultivos, inmunoelectromicroscopía, ELISA, o látex para
rotavirus).
Es
preferible enviar las muestras para estudio virológico sin medio de
cultivo, pues este diluye las partículas virales disminuyendo la
sensibilidad. Si su envío se retrasa mucho es necesario utilizar un
medio de transporte. Se enviarán en recipientes colocados en hielo. Para
el estudio de parásitos es útil además, enviar una muestra pequeña en un
medio fijador. Una parte en dos de fijador de alcohol polivinílico.
Las
muestras para coprocultivo, deberán tomarse antes de la administración
de antimicrobianos o agentes antidiarréicos. Es conveniente también
evitar, sobre todo para estudios parasitológicos la utilización previa
de antiácidos y laxantes oleoso, así como de los compuestos
habitualmente utilizados para estudios radiológicos digestivos (bario,
bismuto).
Indicar siempre el juicio diagnóstico de presunción y si el paciente es
menor de un año.
Solicitar las investigaciones especiales explícitamente (C. difficile,
C. perfringens, S. aureus, etc.).
Si
con la primera muestra no se detecta la presencia de enteropatógenos, es
necesario enviar en los días siguientes, dos tomas adicionales. En
general, para los estudios parasitológicos, se deben enviar tres
muestras tomadas en diferentes días.
Muestras
inadecuadas.
-
Muestras de restos fecales.
-
Heces emitidas anteriores a dos horas y que no hayan sido refrigeradas.
-
Las
tres tomas realizadas el mismo día.
Interpretación de
los coprocultivos:
El coprocultivo cumple con la metodología adecuada para identificar las
nuevas bacterias enteropatógenas, además contribuye al conocimiento de
la etiología de la EDA infantil y al buen tratamiento.
La
colección y preservación adecuada de muestras de heces para coprocultivo
es a menudo dispendiosa pero necesaria para el aislamiento de
microorganismos causantes de procesos infecciosos gastrointestinales.
Recomendaciones
para la recolección de las muestras:
-
Recolección en el estadio primario de la enfermedad (salmonella y
shigella se encuentran en número apreciable en las heces en el período
agudo, por lo que la muestra debe obtenerse en los tres primeros días),
lo mismo que para tratar de aislar E. Coli enteroinvasiva y/o E. Coli
toxigénica.
-
Si
es posible, examinar varias muestras sucesivas de materia fecal para
mayores posibilidades de aislamiento.
-
No
debe iniciarse tratamiento antibiótico antes de tomar las muestras para
coprocultivo.
-
Muestras de heces recién emitidas, en recipientes estériles de tamaño
adecuado.
-
Si
hay sospecha de shiquellosis, un escobilleo rectal puede servir, ya que
este microorganismo se encuentra en la parte final del intestino.
-
Los
coprocultivos se piden en toda diarrea desinteriforme, máxime si cursa
con respuesta inflamatoria sistémica, o si hay pus o sangre en las
heces. Estadísticamente los índices de positividad de estos
coprocultivos puede llegar hasta el 75%.
-
Hay
disponibles en algunos laboratorios pruebas que intentan, por métodos
directos o indirectos y de resultado rápido, la detección de antígenos
de diversos gérmenes: ELISA para rotavirus, adenovirus y gardia
lambia,PCR para casi todas las bacterias, hongos y parásitos.
Observaciones:
-
Recogida de la muestra sin contaminar ya que puede alterar el resultado.
-
Informar a la familia si requiere preparación previa (dieta, etc).
EL HEMOCULTIVO
Consiste en la extracción de muestras sanguíneas seriadas para su
estudio y/o cultivo en el laboratorio y así determinar los agentes
patógenos causantes de algunas infecciones.
Foto 4: frascos de hemocultivos
(aerobios y anaerobios)
Procedimiento:
-
Retirar los tapones externos de los frascos.
-
Desinfectar los tapones de goma con alcohol iodado o con iodóforo,
dejándolo secar al menos un minuto.
-
Localizar por palpación la vena que se va a puncionar. Debe utilizarse
una vena distinta para cada extracción.
-
Cuando no haya
venas accesibles puede realizarse la extracción de sangre arterial.
-
No son adecuadas
las muestras procedentes de catéter, solamente en caso de que se
sospeche infección del propio catéter y se complica su retirada; se
recomienda tomas del brazo opuesto y otras del brazo del catéter, para
saber si es intra o extraluminal
-
Desinfectar con alcohol una zona de piel de unos 10 cm de diámetro. Se
comenzará por el centro y se irán haciendo círculos concéntricos hacia
el exterior.
-
Repetir el paso anterior pero con el alcohol iodado, dejándolo secar
durante un minuto.
-
Extraer la sangre sin tocar en ningún momento el campo desinfectado. Si
fuera necesario palpar nuevamente la vena se utilizarán guantes de goma
estériles o se desinfectarán los dedos de la misma manera que la piel
del paciente.
-
La
cantidad de sangre a introducir en cada frasco viene determinada por el
modelo utilizado en cada hospital, entre 15-20 ml por toma en adultos y
1-3 ml en niños.
-
Como norma general es adecuado que la sangre mantenga una proporción
1:10 con el medio de cultivo. Es decir, para un frasco de 100 ml,
introducir 10 ml. de sangre.
-
En
caso de neonatos y niños pequeños en que no se pueden obtener volúmenes
grandes de sangre es suficiente una cantidad de 1-5 ml, que se introduce
en un solo frasco.
-
Introducir la sangre en los frascos evitando que entre aire en el frasco
para cultivo en anaerobiosis. La ventilación se realizará en el
laboratorio de Microbiología. Mover los frascos para que la sangre y el
medio de cultivo se mezclen. Introducir los frascos a 37ºC.
-
Número de muestras: tres hemocultivos por paciente, previos al
tratamiento antimicrobiano.
-
El
intervalo entre las extracciones debe ser superior a una hora cuando sea
posible, pero cuando exista una gran urgencia en iniciar el tratamiento,
este intervalo puede acortarse hasta 15 minutos.
-
En
caso de sepsis y endocarditis subaguda las extracciones se reparten en
24 horas y en caso de que sean los hemocultivos negativos, obtener tres
muestras más al día siguiente.
Transporte.
Deben enviarse al
laboratorio. Hasta su envío mantener a 35-37ºC; cuando esto no sea
posible, mantener a temperatura ambiente. Nunca debe refrigerarse ni
congelarse.
.Métodos
de estudio.
Los
métodos para el estudio microbiológico de los hemocultivos pueden ser
cuantitativos, semicuantitativos y cualitativos.
-
Los
métodos cuantitativos permiten establecer el número de bacterias
por ml. de sangre cultivada
-
En
los métodos semicuantitativos se sigue un procedimiento de lisis
centrifugación. La sangre se centrifuga y el sedimento se siembra
directamente en las placas de cultivo. Este método permite una
valoración semicuantitativa por recuento de las colonias aisladas.
-
Los
métodos cualitativos se realizan cultivando la sangre en frascos
con medio líquido o bifásico y son los utilizados de forma rutinaria en
la mayoria de los Laboratorios de Microbiología.
Observaciones
En
primer lugar, es necesario recordar que la sangre inoculada en los
frascos puede contener microorganismos, incluidos el virus de la
hepatitis o el VIH, lo que implica un riesgo de infección para las
personas que los manipulan. En este sentido, existen en todos los
hospitales normas de prevención en el manejo de sangre que deben ser
seguidas de forma estricta y que muy someramente se podrían resumir en
la utilización de guantes, batas, mascarillas desechables, campanas
protectoras y en la no reinserción de las agujas en su capuchón
original, arrojándolas a los envases preparados a tal efecto.
OBTENCIÓN DE
ESPUTO PARA EXAMEN MICROBIOLÓGICO Y CITOLÓGICO
El
estudio de esputo en el laboratorio, nos facilita una información
esencial y rápida de la evaluación, evolución y sobre el diagnóstico en
los pacientes con patología respiratoria.
Objetivos:
-
Determinar si el microorganismo es Gram + o Gram -: mediante tinción de
Gram, cuyos resultados están disponibles en pocas horas, siendo útil
para seleccionar la antibioterapia hasta que estén otros resultados.
-
Determinar presencia de bacilos de tuberculosis: mediante tinción
acidoalcoholresistente (BAAR). Resultado en pocas horas.
-
Determinar mediante cultivo específico la evidencia o no de
mycobacterium tuberculoso: mediante cultivo de Lowestein. Resultado en
3-6 semanas; se requieren muestras de 3 días consecutivos.
-
Determinar la presencia de células malignas: muestra de esputo aislada
con solución fijadora.
Foto 5: dispositivo de extracción por aspiración de esputo y/o
secreciones bronquiales (mucoextractor)
Procedimiento:
-
El
esputo se recoge a primera hora de la mañana (más concentrado y más
abundante por el acumulo que se produce con el sueño)
-
La
muestra se recoge en un contenedor estéril y se transporta de forma
rápida al laboratorio.
-
La
recolección del esputo se puede realizar por:
-
Obtención directa:
Volumen mínimo.
Transporte y
conservacion.
-
Envío inmediato al laboratorio (no superior a 2 horas).
-
Si
no es posible, conservar en frigorífico 4ºC.
-
Es
preferible realizar la toma antes de instaurar el tratamiento
antibiótico.
-
No
es útil para anaerobios.
-
No
son inoculables las secreciones de sospechosa procedencia.
-
La
expectoración debe rechazarse hasta obtener un esputo de calidad
suficiente (mas de 25 leucocitos polimorfonucleares por campo 100x, y de
10 células epiteliales por campo 100x).
-
Instruir al
paciente para que expectore cualquier secreción postnasal.
-
Explicar la mejor
forma de obtener un esputo: realizar una inspiración profunda hasta su
máxima capacidad y exahalar el aire con una profunda tos expulsiva
directamente en el contenedor estéril y de boca ancha.
-
Anotar el color,
consistencia, olor y cantidad del esputo.
-
Obtención indirecta:
-
El
esputo también se puede recoger en pacientes que son incapaces de toser
y expectorar, mediante aspiración nasotraqueal o traqueal.
-
El
recipiente es estéril y especial para adaptar una sonda de aspiración
al mismo.
-
La
técnica de aspiración, es estéril.
-
Obtención mediante lavado gástrico:
-
Especialmente indicada en pacientes que no cooperan, en pacientes en
fases agudas (proceso maligno o tuberculoso), o en niños muy pequeños.
-
Este método está basado en el hecho el paciente deglute esputos mientras
duerme y durante la expectoración de las primeras horas de la mañana.
-
Para su obtención se inserta una sonda nasogástica, que retiraremos, una
vez obtenida la muestra.
-
Es
importante un mínimo de 8 horas de ayunas antes de la extracción.
-
Se
aspira el contenido gástrico con una jeringa, se coloca en un contenedor
estéril y se envía al laboratorio.
LÍQUIDO
CEFALORRAQUÍDEO
Obtención de líquido cefalorraquídeo por punción lumbar con fines
diagnósticos.
Se
obtendrá antes de instaurar cualquier terapéutica antibiótica
Procedimiento
-
Se
localiza la zona elegida para la punción lumbar mediante palpación de
los espacios intervertebrales una vez colocado el paciente en la
posición adecuada.
-
Se
desinfecta con alcohol al 70% una zona de uso 10 cm. de diámetro en el
área elegida, la aplicación del desinfectante se hace de forma
concéntrica del centro a la periferia. Se repite la operación con
povidona yodada que se deja secar durante un minuto.
-
Realizar la punción entre los espacios inter-vertebrales L3-L4, LA-L5 o
L5-S1, siguiendo las normas de la más estricta asepsia.
-
Al
llegar al espacio subaracnoideo retirar el estilete y dejar salir
libremente el líquido cefalorraquídeo que se recogerá en tres tubos sin
conservantes con tapón de rosca.
-
Generalmente el primero para el estudio bioquímico, el segundo para el
estudio microbiológico y el tercero para investigación de células
(este suele ser el más transparente aunque la punción haya sido
traumática). No obstante, el tubo más turbio se enviará a Microbiología.
Foto 6: recipientes estériles para
LCR – agujas para punción lumbar
Observaciones.
-
Para el estudio bacteriológico rutinario es suficiente 1 ml, aunque es
preferible disponer de volúmenes superiores.
-
Para hongos o micobacterias se necesitan al menos 2 ml adicionales más
por cada uno de los estudios, siendo deseable llegar a los 10 ml
-
Para estudio de virus se necesita al menos 1 ó 2 ml más.
-
El
producto debe enviarse inmediatamente al laboratorio, pues alguno de los
agentes de hemocultivo que se mantendrá en idénticas condiciones
hasta su procesamiento en el laboratorio. Si no se dispone de
estufas se mantendrá a temperatura ambiente. Nunca deberá
refrigerarse pues se puede afectar la viabilidad de N. meningitidis y H.
influenzae.
-
En
el LCR no se estudian rutinariamente anaerobios. En caso de solicitar
una investigación se enviará en un medio de transporte de líquidos
para estudio de anaerobios o en hemocultivo de anaerobios.
-
Las
muestras para el estudio de virus se enviarán en hielo, si el envío se
retrasa más de 24 horas, se deberá de conservar a -70ºC.
-
Como la meningitis suele surgir por un proceso bacteriémico se
solicitarán simultáneamente hemocultivos, pudiendo ser así mismo
estudiadas las posibles lesiones metastásicas cutáneas.
-
Es
necesario que el médico señale claramente las investigaciones
solicitadas (bacterias habituales, micobacterias, anaerobios,
hongos o virus).
CULTIVO DE GARGANTA
Es
una prueba de laboratorio que se hace para aislar e identificar
organismos que puedan causar una infección en la garganta.
Objetivos
-
El
examen se realiza cuando se sospecha de una infección en la garganta, en
particular, una infección de garganta por estreptococos.
-
Este examen se usa principalmente para identificar estreptococos en la
garganta, sin embargo, se pueden detectar otros organismos, dependiendo
del tipo de medio de cultivo utilizado.
Procedimiento
-
Lactantes y/o niños: la preparación física y psicológica que se puede
brindar para este o cualquier examen o procedimiento depende de la edad,
intereses, experiencias previas y grado de confianza del niño.
-
La
persona debe inclinar la cabeza hacia atrás con la boca bien abierta. Se
deben resistir las náuseas y cerrar la boca mientras el cepillo toca la
parte posterior de la garganta cerca de las amígdalas. No se deben usar
enjuagues bucales antisépticos antes del examen.
-
Se
cepilla la parte posterior de la garganta con un aplicador de algodón
estéril (hisopo), cerca del área de las amígdalas y se coloca en un tubo
con un medio de cultivo.
Observaciones
-
Se
pueden indicar antibióticos antes de conocer los resultados. Los
antibióticos deben tomarse según las instrucciones médicas, aunque los
síntomas hayan desaparecido.
-
Con
el fin de mejorar las posibilidades de detectar bacterias, el aplicador
se puede utilizar para raspar la parte posterior de la garganta varias
veces.
-
La
presencia de bacterias normales de la boca de la garganta es un hallazgo
normal.
-
La
presencia de ciertos organismos, como los estreptococos beta-hemolíticos
del grupo A, que ocasionan infección de garganta por estreptococos, al
igual que otros organismos que causan difteria y gonorrea, es anormal y
puede ser indicio de la presencia de una infección.
Complicaciones
CULTIVO DE LA NASOFARINGE; CEPILLADO PARA VIRUS
RESPIRATORIOS; CEPILLADO PARA ESTAFILOCOCOS
Consiste en la extracción de una muestra de secreciones nasofaríngeas es
una muestra de las secreciones nasofaríngeas para observar y estudiar en
el laboratorio y así para detectar la presencia de posibles organismos
patógenos.
Foto 7: hisopos o
escobillones.
Objetivos
Con
este examen se identifican los microorganismos que causan los síntomas
del tracto respiratorio superior. Los cultivos nasofaríngeos sirven para
identificar virus respiratorios como
Staphyloccus aureus, Bordetella pertussis y Neisseria
meningitidis
(tipos de bacterias). El cultivo puede usarse para verificar la terapia
con antibióticos apropiada.
Procedimiento
-
Se
le pide al paciente que tosa antes de comenzar el examen y que incline
su cabeza hacia atrás. Se pasa un aplicador (hisopo) de algodón con
suavidad a través de la fosa nasal hasta la nasofaringe, la porción de
la faringe que se encuentra sobre el techo de la boca. Se hace rotar el
aplicador (hisopo) rápidamente y luego se retira.
-
Adultos:
no hay preparación especial.
-
Bebés y niños:La
preparación física y sicológica que se puede brindar para este o
cualquier examen o procedimiento depende de la edad, intereses,
experiencias previas y grado de confianza del niño.
Observaciones
-
Es
normal la presencia de los microorganismos que suelen encontrarse en la
nasofaringe.
-
Se
encuentran patógenos (cualquier virus, bacteria u hongo que pueda causar
una enfermedad).
Complicaciones
CULTIVO DE LÍQUIDO DEL ESPACIO PLEURAL
Es
una prueba de laboratorio que se realiza en el líquido pleural (el
líquido que se encuentra en el espacio alrededor de los pulmones) y que
se utiliza para aislar e identificar los organismos que causan una
infección.
Foto 8: material
para PAF
Objetivos
Este
examen se practica cuando se sospecha la presencia de una infección en
el espacio pleural o cuando en una radiografía de tórax se observa una
acumulación anormal de líquido pleural, pudiendo indicar la presencia de
neumonía, tuberculosis u otro absceso pulmonar.
Procedimiento
La muestra se
obtiene por medio de una toracentesis:
-
Desinfección de la zona del tórax a puncionar.
-
Infiltración de anestésico local.
-
Introducción de aguja entre las costillas.
-
Aspiración de una muestra de líquido en el espacio pleural.
Observaciones
-
Es
importante evitar toser, respirar profundamente o moverse cuando se está
tomando la muestra. No se requiere ninguna otra preparación especial
para el examen.
-
Se
presenta una sensación de punción cuando se inyecta la anestesia e
igualmente se puede sentir algo de presión y dolor localizado leve
cuando la aguja de toracentesis entra en el espacio pleural.
Generalmente, después del examen se toma una radiografía de tórax para
asegurarse de que el tejido pulmonar no haya sido afectado.
-
El
resultado normal de este examen es la ausencia de organismos.
Complicaciones
Existe el riesgo de sangrado pulmonar interno y de neumotórax (pulmón
colapsado). Las complicaciones serias son muy poco frecuentes.
CASOS ESPECIALES
Métodos cuantitativos
En
los pacientes policateterizados o portadores de catéter central para
tratamientos prolongados o hemodiálisis en los que se sospeche que son
foco de infección es posible hacer hemocultivos cuantitativos. Estos se
realizarán a partir del catéter y al mismo tiempo por venopunción. Se
estima que la bacteriemia asociada a un catéter se produce entre el 1 y
el 8% de las cánulas utilizadas. Por otra parte, el 33% de las
bacteriemias nosocomiales tienen este origen.
Procedimiento
-
Se
extraen de 4 a 7 ml. de sangre a través de cada catéter que se quiera
estudiar y se introducen en un tubo que contenga anticoagulante, el
óptimo es el SPS. Se transportará al laboratorio rápidamente y se
realizarán placas por el método de Schotmüeller. En cada uno de los
tubos se especificará de forma muy clara la procedencia de la
extracción. Se procede de la misma manera con la extracción por
venopunción y a la vez se realiza un hemocultivo convencional ya que la
bacteriemia puede ser de muy bajo grado y no detectarse con el método
cuantitativo, o no ser el catéter el foco de la bacteriemia.
-
Las
placas se incuban a 35-37ºC durante 5 días con lectura diaria. El
procesamiento de los positivos es igual al de la técnica convencional
descrita.
-
Se
considera que un catéter es foco de bacteriemia cuando se aísla la misma
bacteria en los dos hemocultivos cuantitativos y el número de UFC/ml.
aisladas en el del catéter es 4 veces superior al obtenido por
venopunción.
Microorganismos
especiales
Micobacterias
La sangre no es
la muestra más adecuada para diagnosticar una micobacteriosis. No
obstante, actualmente en pacientes portadores del VIH se ha observado
que presentan micobacteriemia con relativa frecuencia, generalmente con
muy poca sintomatología o muy inespecífica. En estos casos puede estar
indicado investigar la presencia de micobacterias en sangre.
Leptospiras
La leptospirosis
es una infección aguda producida por espiroquetas del género Leptospira
que se muestra a menudo con un amplio espectro de manifestaciones
clínicas. Generalmente, el microorganismo está presente en la sangre en
la fase aguda, durante la primera semana de la enfermedad. Leishmanias
Pacientes
con infección por VIH
Cada
vez es mayor el número de pacientes atendidos en los centros
hospitalarios portadores del VIH, un alto porcentaje de los cuales son
adictos a drogas por vía parenteral (ADPV) y, al mismo tiempo han
aumentado considerablemente los enfermos con sida. Es bien conocido que
el estado inmunitario de estos pacientes condiciona una elevada
incidencia de infecciones oportunistas, estimándose en este grupo de
población un índice de bacteriemia entre el 7,2 y el 30%, cuya etiología
más frecuente es Streptococcus pneumoniae, Staphylococcus auerus y
Salmonella spp. Además, este tipo de enfermos presentan infecciones
oportunistas diseminadas causadas por micobacteria, hongos o parásitos
que pueden detectarse mediante hemocultivo. Así, son frecuentes las
infecciones diseminadas por Mycobacterium avium, Criptococcus neoformans
y Leishmania donovani y en nuestro país, donde la prevalencia de la
tuberculosis es elevada, es habitual aislar Mycobacterium tuberculosis.
Por lo tanto, es aconsejable notificar siempre al Laboratorio de
Microbiología si un paciente es portador de VIH porque puede ser
conveniente prolongar el período de incubación de los frascos aerobios o
hacer cultivos especiales según la orientación diagnóstica del proceso
infeccioso actual.
Recomendaciones
-
La extracción
de los hemocultivos seguirá unas medidas de asepsia muy rigurosas. Se
informará periódicamente al personal encargado de la extracción de la
importancia de los hemocultivos, |
